Leishmaniosis felina con foco en la manifestación ocular: reporte de un caso

Jun 22, 2023

Parásitos y vectores volumen 16, Número de artículo: 161 (2023) Citar este artículo

537 Accesos

2 Altmetric

Detalles de métricas

En Europa, la leishmaniosis felina es comúnmente causada por Leishmania infantum. Hay poco conocimiento sobre la patogenia, las manifestaciones oculares y el seguimiento a largo plazo en gatos con leishmaniosis.

Una gata europea de pelo corto esterilizada de 6 años de edad fue importada de España a Alemania 2 años antes de su primera presentación clínica. El gato presentaba letargia, pérdida de peso, lesiones ulcerativas en las extremidades anteriores y uveítis crónica de alto grado. El diagnóstico de infección por L. infantum se basó en el hallazgo citológico de amastigotes en lesiones cutáneas, qPCR positiva de EDTA-sangre y PCR positiva de una muestra de citocepillado de la conjuntiva. Los hallazgos de apoyo incluyeron serología positiva por IFAT, electroforesis capilar de proteína sérica con picos en secciones de globulina alfa2 y gamma y elevación marcada de SAA. Se tuvo que realizar enucleación el día 288 en ambos ojos por ceguera, glaucoma y uveítis de alto grado. Histológicamente, un alto número de Leishmania spp. Se encontraron amastigotes en histiocitos. IFAT y PCR fueron positivos en humor acuoso en ambos ojos, respectivamente. Las pruebas de antígeno del virus de la leucemia felina y de anticuerpos del virus de la inmunodeficiencia felina fueron positivas. Los resultados hematológicos y bioquímicos revelaron leucocitosis leve con linfocitosis, monocitosis y eosinopenia, así como una marcada elevación de SAA e hiperglobulinemia. El gato fue tratado con alopurinol, respondió bien y todavía estaba vivo en el seguimiento el día 288 después de la primera presentación. Sin embargo, la enucleación fue necesaria debido al glaucoma refractario y la uveítis.

Por primera vez, se demostró evidencia ocular de anticuerpos IgG contra Leishmania en el humor acuoso de ambos ojos en gatos. Existe un conocimiento limitado sobre la patogenia, las opciones de tratamiento y los resultados en gatos infectados con L. infantum. Este informe de caso apoya la hipótesis de que la inmunosupresión aumenta el riesgo de signos clínicos de leishmaniasis en gatos. Los picos de globulina alfa2 y gamma en la electroforesis capilar de proteínas séricas son criterios de apoyo para el diagnóstico de infección por L. infantum. SAA es valioso para el monitoreo. En cuanto a la oftalmología, la uveítis y el glaucoma pueden tener un mal pronóstico.

En Europa, la leishmaniosis felina es causada con mayor frecuencia por Leishmania infantum en el área del Mediterráneo [1,2,3,4]. En general, la leishmaniosis se considera una enfermedad emergente a nivel mundial, con flebótomos como vectores primarios y perros como principal reservorio de patógenos, mientras que los gatos son huéspedes accidentales en países endémicos [5, 6]. Además de la transmisión por vectores, la transfusión de sangre [2, 7,8,9,10], la transmisión vertical [11], las heridas por mordedura [12] y la transmisión venérea [13] se han sugerido como otras posibles fuentes de infecciones en gatos y perros. .

Las manifestaciones clínicas más comunes en gatos incluyen signos dermatológicos como lesiones cutáneas y mucocutáneas [4, 14, 15] y signos oftalmológicos, es decir, lesiones conjuntivales, corneales, uveales y retinianas [1, 4, 16, 17], así como no -signos específicos como letargo, anorexia y pérdida de peso [1, 4]. La leishmaniosis felina se informa con mayor frecuencia en gatos adultos con una mediana de edad de 7 años [18]. Un sistema inmunitario deteriorado parece predisponer a los gatos al desarrollo de signos clínicos, por ejemplo, infecciones simultáneas por FIV y/o FeLV, neoplasia, enfermedades inmunomediadas y tratamiento con fármacos inmunosupresores como los corticosteroides [4]. Los gatos con leishmaniosis y signos clínicos suelen tener altos niveles de parasitemia e hiperglobulinemia, mientras que sus niveles de anticuerpos pueden ser bajos o altos [19].

Para el diagnóstico se dispone de métodos de detección directos (PCR, citología, histología, inmunohistoquímica, cultivo) e indirectos (IFAT, Western blot, prueba de aglutinación directa) [18]. La información sobre las opciones de tratamiento en gatos es mínima y se basa en informes de casos individuales [15, 20,21,22,23,24,25]. El tratamiento de los gatos con leishmaniosis clínica todavía se basa empíricamente y no está indicado en la etiqueta, utilizando fármacos que normalmente se administran a los perros [1, 18, 19].

La prueba de PCR en tiempo real TaqMan® se realizó en LABOKLIN (Bad Kissingen, Alemania); los valores de umbral de ciclo (cq) < 35 se consideraron positivos. Cada ejecución de PCR incluía un control negativo y positivo, así como un control de extracción en cada muestra para verificar la extracción de ácido nucleico y la inhibición de la PCR (Kit de detección de control de proceso de ADN/ARN, Roche Diagnostics GmbH, Mannheim, Alemania). Pruebas para Leishmania spp. mediante PCR se realizó usando sangre con EDTA, humor acuoso y una muestra de citocepillado recolectada de la conjuntiva (objetivo: ADN del minicírculo del cinetoplasto; cebador: 5ʹ—AAC TTT TCT GGT CCT CCG GGT AG—3ʹ, 5ʹ—ACC CCC AGT TTC CCG CC —3ʹ; sonda: 5ʹ—FAM—AAA AAT GGG TGC AGA AAT—NFQMGB—3ʹ [26]). Pruebas para Hepatozoon spp. (objetivo: ARNr 18S; cebador: 5ʹ—AAC ACG GGA AAA CTC ACC AG—3ʹ, 5ʹ—CCT CAA ACT TCC TCG CGT TA—3ʹ; sonda: 5ʹ—FAM—TCA CCC TAT TTA GCA GGT TAA GGT CTC GT—BBQ —3ʹ; metodología propia), Dirofilaria spp. (objetivo: 5.8S rDNA, cebador: 5ʹ—AGT GCG AAT TGC AGA CGC ATT GAG—3ʹ, 5ʹ—AGC GGG TAA TCA CGA CTG AGT TGA- 3ʹ; sonda: 5ʹ—FAM—TGA GCA CAA AGA TTT CGA AYG CAC ATT G—BHQ1—3ʹ [27]), Rickettsia spp. (objetivo: ARNr 23S; cebador: 5ʹ—AGC TTG CTT TTG GAT CAT TTG G- 3ʹ, 5ʹ—TTC CTT GCC TTT TCA TAC ATC TAG T—3ʹ; sonda: 5ʹ—FAM—CCT GCT TCT ATT TGT CTT GCA GTA ACA CGC CA—BHQ-1—3ʹ [28]) y Bartonella henselae (objetivo: Alr-gcvP IGS, cebador: 5ʹ—GAG GGA AAT GAC TCT CTC AGT AAA A—3ʹ, 5ʹ—TGA ACA GGA TGT GGA AGA AGG—3ʹ ; sonda: 5ʹ—FAM—CAG CCA AAT ATA CGG GCT ATC CAT CAA—BHQ-1—3ʹ [29]) en sangre con EDTA respectivamente. Prueba PCR para calicivirus (objetivo: ORF1; cebador: 5ʹ- GTT GGA TGA ACT ACC CGC CAA TC—3ʹ, 5ʹ—CAT ATG CGG CTC TGA TGG CTT GAA ACT G—3'; sonda: 5ʹ- FAM—TCG GTG TTT GAT TTG GCC TG—BHQ-1—3ʹ [30]) en un hisopo oral.

Para la detección serológica de Leishmania spp., se utilizaron pruebas ELISA (NovaTec VetLine Leishmania ELISA, Immundiagnostica GmbH, > 11 LE positivos) y IFA (MegaFLUO® LEISH, MegaCor Diagnostik GmbH, Hörbranz, Austria; > 1:64 positivos) en suero. y humor acuoso respectivamente. Para la prueba IFA de suero en LABOKLIN, se detectaron anticuerpos para Ehrlichia spp. por MegaFLUO® EHRLICHIA canis (MegaCor Diagnostik GmbH, Hörbranz, Austria; ≥ 1:40 positivo) y por Rickettsia spp. por RICKETTSIA CONORII IFA SLIDE (Viracell, Granada, España; > 1:128 positivo) en suero. Las pruebas para FIV se realizaron mediante NovaTec VetLine Feline Immunodeficiency Virus ELISA y para antígeno FeLV mediante NovaTec VetLine Feline Leukemia Virus Antigen ELISA (NovaTec Immundiagnostica GmbH, Dietzenbach, Alemania) en suero en LABOKLIN. El análisis de transferencia Western para FIV de suero se realizó en el Laboratorio Clínico, Departamento de Diagnóstico Clínico y Servicios de la Facultad de Vetsuisse (Universidad de Zurich, Suiza) y se consideró positivo si dos bandas con un peso molecular de 15,000 (p15) y 24,000 ( p24) Dalton, respectivamente, eran reconocibles en la tira secante.

Una gata europea de pelo corto esterilizada de 6 años de edad fue presentada a la práctica de animales pequeños del Dr. Fritz Gräßer (Großostheim, Alemania) con letargo, pérdida de peso (2,8 kg de peso corporal, puntaje de condición corporal 2/9 [31]), secreción ocular (fig. 1A) y lesiones ulcerativas focales en miembros anteriores (fig. 1B, C). El gato había sido importado de España a Alemania 2 años antes y se mantuvo bajo techo en Alemania. Inicialmente, hubo gingivitis ulcerativa moderada y estornudos frecuentes en la primera presentación después de la importación. El gato dio positivo por calicivirus en PCR, lo que indica gripe felina. Un año después, los síntomas respiratorios empeoraron, por lo que se realizó una endoscopia rinonal, con el diagnóstico de rinitis crónica. El gato fue tratado con doxiciclina (Doxybactin® 50 mg comprimidos, Dechra, 10 mg/kg una vez al día por vía oral), meloxicam (Metacam® 0,5 mg/ml suspensión para uso en gatos, Boehringer-Ingelheim, 0,1 mg/kg una vez al día por vía oral) y dexametasona inhalada (50 ml de dexametasona al 2% con 500 ml de cloruro de sodio) para el alivio de los signos clínicos. Tres meses después de iniciar el tratamiento con corticoides, el propietario notó lesiones ulcerativas en ambos miembros anteriores, así como opacidad corneal (Fig. 1A-D). El gato fue llevado de nuevo al consultorio de pequeños animales del Dr. Fritz Gräßer (Großostheim, Alemania). El tiempo de esta re-presentación se define como día 0 en el artículo siguiente. Un examen general reveló estridor nasal y una gingivitis ulcerativa de alto grado. Se tomaron raspaduras de lesiones ulcerativas observadas en las caras dorsales de las articulaciones del carpo y se enviaron para examen citológico. El resto del examen general fue normal (es decir, temperatura rectal 38,8 °C; frecuencia del pulso 148/min, sin adenomegalia linfática).

Gata europea de pelo corto esterilizada de 6 años importada de España a Alemania dio positivo para Leishmania spp. en PCR, ELISA de anticuerpos e IFAT. A Primera presentación con estridor nasal, secreción ocular y pequeña lesión ulcerosa en el hocico. B Lesión ulcerosa en el carpo izquierdo en la primera presentación. C Lesión ulcerosa en el carpo derecho en la primera presentación. D Opacidad corneal en el ojo derecho en la primera presentación. E Presentación el día 29 de iniciar tratamiento con alopurinol. F y G El día 29 de iniciado el tratamiento con alopurinol cicatrizan las lesiones ulcerosas en ambos miembros anteriores

El examen oftalmológico realizado en un centro especializado (Tierärztliches Augenzentrum en Frankfurt-Kalbach, Alemania) reveló una respuesta de amenaza negativa en el ojo derecho y una respuesta positiva en el izquierdo. El reflejo de deslumbramiento fue positivo en ambos ojos. La respuesta pupilar a la luz no fue evidente en ninguno de los dos ojos; había discoria y sinequia posterior. La tonometría de rebote (Icare® TONOVET, Helsinki, Finlandia) se utilizó para la medición de la presión intraocular y reveló 7 mmHg y 4 mmHg para el ojo derecho e izquierdo, respectivamente. En la córnea del ojo derecho se visualiza con lámpara de hendidura (Kowa SL-15L, Kowa, Japón) una erosión focal central de 2 mm de diámetro acompañada de leve edema difuso. También notaron la presencia de precipitados queráticos especialmente en la mitad ventral de las córneas así como coágulos de fibrina en la cámara anterior de ambos ojos. El fondo de ojo no era visible en el ojo derecho y anodino en el ojo izquierdo utilizando un oftalmoscopio indirecto (Heine omega 500 LED, Heine Optotechnik GmbH & Co. KG, Gilching, Alemania). La citología de una muestra de citocepillado con tinción Diff-Quik Romanowsky en LABOKLIN reveló una inflamación moderada dominada por macrófagos. Además, estaban presentes cantidades bajas de neutrófilos y cantidades moderadas de bacterias cocoides extracelulares. No hubo evidencia citológica de amastigotes de Leishmania. Sin embargo, las pruebas del citocepillo para Leishmania spp. por PCR fue positivo.

Se realizó un hemograma completo (CBC; ADVIA 2120i, Siemens Healthineers), perfil bioquímico que incluye SAA (Cobas 8000, Roche), dimetilarginina simétrica (SDMA, ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas manual) y electroforesis capilar de proteínas séricas (Sebia Minicap, Sebia). afuera. La detección de patógenos infecciosos transmitidos por vectores se realizó utilizando un "perfil de viaje felino" (PCR: Hepatozoon spp. y Dirofilaria spp.; IFAT de suero: Ehrlichia spp., Leishmania spp. y Rickettsia spp.) con pruebas adicionales para Leishmania spp. mediante pruebas de PCR cuantitativas. El análisis de orina (Cobas u601, Roche) se realizó en LABOKLIN (Bad Kissingen, Alemania), incluida la microscopía del sedimento urinario y la relación proteína-creatinina urinaria (UPC, Cobas 8000, Roche).

La hematología reveló leucocitosis leve con linfocitosis leve, monocitosis leve, eosinopenia, reticulocitosis leve y trombocitopenia leve (tabla 1). El perfil bioquímico mostró hiperglobulinemia leve, elevación marcada de SAA, elevaciones leves de triglicéridos y colesterol, hiperpotasemia leve y disminución de la concentración de hierro (Tabla 1). La electroforesis de proteínas séricas mostró picos policlonales en las secciones alfa2 y gamma (archivo adicional 1). Las pruebas de antígeno FeLV, anticuerpos FIV y transferencia Western FIV fueron positivas. Dentro del “perfil de viaje felino”, la IFAT para L. infantum fue positiva con un título de 1:4096 y para Rickettsia con un título de 1:256; las pruebas para todos los demás patógenos incluidos en el panel fueron negativas. Una Leishmania spp cuantitativa. La PCR fue positiva con 786 organismos Leishmania/ml de sangre. La citología con tinción de Diff-Quik Romanowsky reveló un alto número de amastigotes intra y extracelulares (Fig. 2A). Pruebas PCR para Rickettsia spp. y Bartonella henselae fue negativa.

Citología de lesiones ulcerativas en un gato europeo de pelo corto de 6 años importado de España a Alemania con inflamación granulomatosa y alto número de amastigotes intra y extracelulares de Leishmania spp. B Iridociclitis linfohistiocítica de alto grado en un gato de 6 años con leishmaniosis felina, tinción con hematoxilina eosina, barra de 500 µm. C Inflamación linfohistiocítica intraocular con Leishmania spp intracelular. amastigotes (flechas negras) en un gato de 6 años con leishmaniosis felina (tinción con hematoxilina-eosina, según los procedimientos estándar de operación en el Laboratorio LABOKLIN, Bad Kissingen, Alemania), barra 10 µm

Por la presencia de manifestaciones oftalmológicas, se pautó adicionalmente Ketorolac-Trometamol y, tras la cicatrización de la erosión corneal, acetato de prednisolona el día 75 (tabla 2). Una qPCR en el día 96 reveló un aumento de Leishmania en la sangre a 238 por mililitro, en un contexto de leucocitosis leve con linfocitosis y monocitosis, lo que podría indicar una inflamación debida a la medicación inmunosupresora. En consecuencia, la dosis de alopurinol se duplicó a 25 mg BID PO, después de lo cual el número de Leishmania detectable disminuyó a 11 Leishmania/ml de sangre el día 196, con SAA dentro del rango de referencia. El día 288 se presentó la gata porque se tuvo que realizar glaucoma y enucleación de ambos ojos. SAA mostró una leve elevación y se detectaron 49 leishmania/ml de sangre en la prueba de PCR cuantitativa (Tabla 2).

Tras la enucleación, se realizó histopatología de ambos ojos en LABOKLIN (Bad Kissingen, Alemania). Ambos ojos se enviaron fijados en formalina tamponada neutra al 10%. Macroscópicamente, la córnea estaba turbia. El humor acuoso era lechoso, el vítreo del ojo no era completamente transparente y la retina estaba desprendida en gran medida en ambos ojos. Las secciones representativas se incluyeron de forma rutinaria en cera de parafina y los portaobjetos se tiñeron con hematoxilina y eosina. Microscópicamente, había una destrucción severa de los órganos internos de los ojos acompañada de una infiltración severa de predominio de linfocitos, histiocitos y, en menor medida, neutrófilos (Fig. 2B). Había una panuveítis severa (iridociclitis con infiltración de la córnea, coriorretinitis con desprendimiento extenso de la retina). Muchas Leishmania spp. se detectaron amastigotes multifocalmente en los histiocitos (Fig. 2C). El humor acuoso de ambos ojos fue probado por Leishmania spp. PCR cualitativa (positiva, cq en ambos ojos < 15), Leishmania spp. IFAT (ojo derecho: 1:1024, ojo izquierdo: 1:512) y Leishmania spp. ELISA (ojo derecho: 15,1 LE, ojo izquierdo: 15,3 LE). Además de una inflamación mixta en la citología, ninguna Leishmania spp. Se detectaron amastigotes en portaobjetos nativos y citocentrifugados teñidos con tinción Diff-Quik Romanowsky respectivamente.

Se realizó un diagnóstico de leishmaniosis felina basado en la detección molecular de Leishmania spp. y apoyado por la detección serológica, citológica e histológica del patógeno. Además, presentaba uveítis y sinequias crónicas, rinitis y lesiones cutáneas ulcerativas.

El análisis de orina se realizó el día 66 después de la primera presentación y mostró una gravedad específica de 1030 g/l, pH de 8,0 y UPC de 0,1. Había proteinuria leve (+); todos los demás parámetros fueron anodinos.

Se prescribió la aplicación de alopurinol (12,5 mg dos veces al día por vía oral) tras el diagnóstico de leishmaniosis felina. El gato estaba en buenas condiciones generales tanto en el día 48 como en el 66 y estaba aumentando de peso (3,0 kg en el día 48; 3,3 kg en el día 66). Su gingivitis mejoró a una gravedad de leve a moderada, y las lesiones ulcerativas observadas inicialmente fueron mínimas el día 48 (Fig. 1E-G) y ya no eran visibles el día 66. Las anomalías hematológicas del día 0 al día 288 se enumeran en la Tabla 2. la bioquímica, la hiperglobulinemia leve y el bajo nivel de hierro seguían presentes el día 48, mientras que el SAA solo estaba levemente elevado. El día 66 se detectó hiperproteinemia leve con hiperglobulinemia moderada, elevación leve de glutamato deshidrogenasa (GLDH), SAA y colesterol, así como disminución de la concentración de hierro (Tabla 1).

La Leishmania spp. El título de IFAT seguía siendo positivo pero disminuyó a 1:512 y 1:1024 los días 48 y 66, respectivamente. Una Leishmania spp cuantitativa. La PCR mostró 191 Leishmania/ml de sangre el día 48 y 1 Leishmania/ml de sangre el día 66 (Tabla 1). Además de las pruebas IFA, una Leishmania spp. Se realizó ELISA utilizando el suero a partir del día 96 (día 96: IFAT 1:512, ELISA 23,7 LE; día 196: IFAT 1:256, ELISA 14,7 LE; día 288: IFAT 1:256, ELISA 12,9 LE).

Según el conocimiento de los autores, este es el primer informe de caso que demuestra anticuerpos IgG contra Leishmania en el humor acuoso de gatos. En conejos salvajes de Grecia, la detección de anticuerpos en el humor acuoso reveló una especificidad del 100 %, pero una sensibilidad reducida en comparación con el suero [32]. Esto indicó el valor del humor acuoso en los estudios epidemiológicos para confirmar la exposición a nivel de la población, pero se interpretó como que tenía poco valor de diagnóstico a nivel individual. Los anticuerpos en el humor acuoso podrían detectarse debido a un aumento de la permeabilidad de la barrera hematoacuosa oa la producción local de anticuerpos, especialmente causada por microorganismos involucrados en la patogenia de la uveítis [33, 34]. En perros con uveítis y detección de anticuerpos IgG contra Leishmania en el humor acuoso, se detectaron niveles más altos de IgG en muestras oculares en comparación con el nivel de anticuerpos en el suero o incluso en ausencia de anticuerpos IgG contra Leishmania en las muestras de suero [35, 36].

Un informe de caso describió una mejoría de los signos oculares después de 6 meses de tratamiento con alopurinol (10 mg/kg dos veces al día por vía oral) en la infección por L. infantum en un gato de Brasil [25]. Una inflamación mixta fue diagnosticada por citología [25], similar al gato descrito en este reporte de caso. En otro informe de caso, se observó una mejoría ocular 2 meses después de comenzar la terapia con alopurinol en combinación con prednisolona, ​​dorzolamida y timolol [21]. Según el leal saber y entender de los autores, ningún estudio ha evaluado el efecto del alopurinol sobre la inflamación intraocular debida a una infección por Leishmania spp., y no está claro por qué los signos oftalmológicos empeoraron en nuestro gato y se hizo necesaria la enucleación. Sin embargo, la manifestación ocular de la leishmaniosis felina se considera rara, especialmente en comparación con los perros. En la leishmaniosis canina es bien sabido que las manifestaciones oculares son frecuentes y las complicaciones en los tejidos afectados pueden conducir a la ceguera. En 53 perros infectados con L. infantum que presentaban lesiones oculares y perioculares, los principales hallazgos oftalmológicos fueron queratoconjuntivitis (72 %), hiperplasia de los folículos linfáticos conjuntivales (55 %), blefaritis (51 %) y uveítis (21 %) [37]. Curiosamente, se observó evidencia ocular de anticuerpos IgG contra L. infantum en el 74 % de los perros infectados [37], lo que también se demostró en nuestro gato. Se detectaron niveles elevados de anticuerpos especialmente en perros con uveítis, como también se demostró en nuestro gato con 1:512 y 1:1024 en IFA en el humor acuoso de ambos ojos, respectivamente.

Los informes de leishmaniosis felina se refieren con mayor frecuencia a gatos adultos (mediana de 7 años) de países endémicos, especialmente en el área del Mediterráneo [18, 19], lo que encaja bien con nuestro gato de 6 años importado de España que también dio positivo para FeLV y FIV . Según se informa, la leishmaniosis clínica en gatos se asocia con una respuesta inmune alterada, que puede ser causada por infecciones como FeLV o FIV o por un tratamiento inmunosupresor [2, 4, 7, 38,39,40,41]. Tanto el inicio de los signos clínicos (es decir, el día 0) como la recaída en el día 96 se asociaron con la administración local de fármacos inmunosupresores (tabla 2).

Este gato se presentó con signos dermatológicos y oftalmológicos compatibles con leishmaniosis felina. Las lesiones cutáneas o mucocutáneas son las manifestaciones más comunes de la leishmaniosis felina, seguidas de signos clínicos inespecíficos como letargo, anorexia y pérdida de peso [4], de acuerdo con los hallazgos de este caso. Las lesiones ulcerativas del gato y la uveítis anterior pueden haber ocurrido como consecuencia de la aplicación de dexametasona. La inflamación crónica proliferativa y ulcerosa de la cavidad oral también se asocia con la leishmaniosis felina [4]. La gingivitis de este gato puede haber sido secundaria a su leishmaniosis, lo que también puede explicar la mejoría que presenta tras iniciar el tratamiento con alopurinol. Aunque raras, se han informado enfermedades crónicas del tracto respiratorio superior con amastigotes en la secreción nasal [16].

En histopatología, se detectó inflamación granulomatosa difusa en combinación con un alto número de amastigotes de Leishmania en 5/15 gatos con leishmaniosis felina [42]. En general, las lesiones de leishmaniosis felina suelen ir acompañadas de una alta carga parasitaria, lo que sugiere que los gatos son un importante reservorio de leishmaniosis [42]. En dos de los cinco gatos, se diagnosticó panuveítis en la histopatología [42]. Otro informe de caso reveló un área localmente extensa de dermis en el pabellón auricular derecho de un gato con leishmaniosis felina expandida por muchos macrófagos epitelioides que contenían amastigotes protozoarios rodeados por un infiltrado mixto de células inflamatorias [43]. Los hallazgos histopatológicos descritos son consistentes con el gato informado en este artículo.

El diagnóstico de la leishmaniosis felina generalmente se basa en hallazgos moleculares, serológicos, citológicos o histológicos [1]. En un estudio previo, el 50% de los casos fueron diagnosticados por citología [4]. La citología es un método de diagnóstico rápido, económico y no invasivo para la leishmaniosis, especialmente en gatos, pero debe confirmarse mediante serología y PCR, ya que se recomienda una combinación de pruebas para el diagnóstico [4].

La anemia no regenerativa se considera una de las anomalías hematológicas más frecuentes en la leishmaniasis felina [4]. En este caso, se notó en el día 48. Se ha informado con frecuencia hiperglobulinemia sin hiperproteinemia [4], y nuestros hallazgos son consistentes con esto (Tabla 1). Las principales alteraciones en el proteinograma de los gatos con leishmaniosis parecen ser un aumento de la fracción alfa-2 y la gammapatía policlonal [44]. Se ha sugerido que estas anomalías podrían ser indicativas de una infección aguda [44], lo que estaría de acuerdo con nuestros hallazgos. No hay informes sobre SAA como un marcador potencial para un tratamiento exitoso, como lo sería la proteína C reactiva en perros. Se ha propuesto SAA como un indicador predictivo útil del pronóstico independientemente del diagnóstico, pero no se incluyeron gatos con leishmaniosis en el estudio asociado [45]. En nuestro gato, la concentración de SAA disminuyó con la mejora de los signos clínicos y la reducción de Leishmania en la PCR cuantitativa, lo que indica que este marcador puede tener algún beneficio potencial.

Según el leal saber y entender de los autores, el tratamiento de la leishmaniosis felina clínica todavía se basa en informes de casos individuales de uso no aprobado de medicamentos que se sabe que son efectivos en perros [1, 15, 18,19,20,21,22, 23,24,25]. En una revisión de la literatura, diferentes protocolos de tratamiento, incluida la monoterapia con alopurinol (5-50 mg/kg una o dos veces al día por vía oral), antimonato de meglumina utilizando diferentes protocolos, miltefosina (2 mg/kg una vez al día por vía oral durante 30 días), fluconazol (5 mg /kg una vez al día por vía oral durante dos meses) e itraconazol (50 mg/gato una vez al día por vía oral durante dos meses) [19]. Además, antimonato de meglumina (50 mg/kg una vez al día por vía subcutánea durante 30 días) en combinación con alopurinol (10 mg/kg una o dos veces al día por vía oral), antimonato de meglumina (50 mg/kg una vez al día por vía subcutánea durante 30 días) en combinación con ketoconazol (10 mg/kg una vez al día por vía oral) administrados durante tres ciclos de 4 semanas de duración, alopurinol (10 mg/kg dos veces al día por vía oral) y domperidona (0,5 mg/kg una vez al día por vía oral en dos ciclos de 28 días) y metronidazol ( 25 mg/kg una vez al día por vía oral) con espiramicina (150 000 UI/kg una vez al día por vía oral) durante 35 días [19]. Debido a que en la mayoría de los informes de casos publicados se aplicó alopurinol como monoterapia con una mejoría clínica en 21 de 29 gatos (72%) [19], decidimos una monoterapia con alopurinol, teniendo en cuenta que se informaron recaídas. El resultado de la terapia con alopurinol en gatos puede variar desde la ausencia de respuesta hasta la curación clínica con una dosis recomendada de 10 a 30 mg/kg o 100 mg/gato por vía oral una o dos veces al día para uso a largo plazo [18]. El aumento de las enzimas hepáticas, la lesión renal aguda, la coprostasis y la toxidermia son efectos secundarios potenciales del alopurinol en gatos [18, 19], pero ninguno de estos efectos se ha observado hasta ahora en nuestro gato. Esto puede deberse a la dosis relativamente baja de alopurinol (12,5 mg BID desde el día 0 hasta el día 96 y 25 mg BID desde el día 96 en adelante, Tabla 2). Se tomó la decisión de no usar miltefosina o antimoniato de meglumina debido al riesgo de anemia hemolítica con cuerpos de Heinz [46] y la necesidad de aplicación subcutánea, respectivamente.

El seguimiento de la terapia incluye exámenes hematológicos y bioquímicos, pruebas serológicas y pruebas PCR cuantitativas. Los gatos con leishmaniosis suelen mostrar niveles altos de anticuerpos [15, 17, 21, 47], que con frecuencia disminuyen con el tratamiento exitoso [15, 20, 21]. Esto también se demostró en nuestro gato.

Según el conocimiento de los autores, este es el primer informe de caso que indica evidencia ocular de anticuerpos IgG contra L. infantum. Sin embargo, esto puede ser más de interés epidemiológico. La leishmaniasis felina debe ser considerada como un posible diagnóstico diferencial en gatos con estancias en el extranjero en países endémicos para L. infantum, especialmente si existen signos dermatológicos y/u oftalmológicos. Son necesarios más estudios para obtener conocimiento sobre las opciones terapéuticas y el seguimiento de la terapia, así como sobre la producción ocular potencial y la evidencia de anticuerpos IgG en gatos infectados con L. infantum.

Todos los datos generados o analizados durante este estudio se incluyen en este artículo publicado.

Ensayo inmunoabsorbente ligado a enzimas de anticuerpos

Ácido desoxirribonucleico

Ácido etilendiaminotetraacético

virus de la leucemia felina

Virus de la inmunodeficiencia felina

Prueba de inmunofluorescencia indirecta

Inmunoglobulina G

Unidades específicas de laboratorio

Reacción en cadena de la polimerasa

Reacción en cadena de la polimerasa cuantitativa

Ácido desoxirribonucleico ribosomal

Ácido ribonucleico ribosomal

Amiloide sérico A

Pennisi MG, Cardoso L, Baneth G, Bourdeau P, Koutinas A, Miro G, et al. Actualización y recomendaciones de LeishVet sobre la leishmaniosis felina. Vectores de parásitos. 2015;8:302.

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Attipa C, Papasouliotis K, Solano-Gallego L, Baneth G, Nachum-Biala Y, Sarvani E, et al. Estudio de prevalencia y análisis de factores de riesgo de patógenos bacterianos, protozoarios y virales seleccionados, incluidos patógenos transmitidos por vectores, en gatos de Chipre. Vectores de parásitos. 2017;10:1

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Baneth G, Nachum-Biala Y, Zuberi A, Zipori-Barki N, Orshan L, Kleinerman G, et al. La infección por Leishmania en gatos y perros alojados juntos en un refugio de animales revela una mayor carga parasitaria en los perros infectados a pesar de una mayor seroprevalencia entre los gatos. Vectores de parásitos. 2020;13:115.

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Fernandez-Gallego A, Feo Bernabe L, Dalmau A, Esteban-Saltiveri D, Font A, Leiva M, et al. Feline leishmaniosis: diagnosis, treatment and outcome in 16 cats. J Feline Med Surg. 2020. https://doi.org/10.1177/1098612X20902865.

Artículo PubMed Google Académico

Baneth G, Koutinas AF, Solano-Gallego L, Bourdeau P, Ferrer L. Leishmaniasis canina: nuevos conceptos y conocimientos sobre una zoonosis en expansión: primera parte. Tendencias Parasitol. 2008;24:324–30.

Artículo PubMed Google Académico

Sherry K, Miro G, Trotta M, Miranda C, Montoya A, Espinosa C, et al. Estudio serológico y molecular de la infección por Leishmania infantum en gatos de la isla de Ibiza (España). Enfermedades zoonóticas transmitidas por vectores. 2011;11:239–45.

Artículo PubMed Google Académico

Persichetti MF, Solano-Gallego L, Serrano L, Altet L, Reale S, Masucci M, et al. Detección de patógenos transmitidos por vectores en gatos y sus ectoparásitos en el sur de Italia. Vectores de parásitos. 2016;9:2

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Brianti E, Falsone L, Napoli E, Gaglio G, Giannetto S, Pennisi MG, et al. Prevención de la leishmaniosis felina con un collar de matriz polimérica de imidacloprid 10%/flumetrina 4,5%. Vectores de parásitos. 2017;10:334.

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Diakou A, Di Cesare A, Accettura PM, Barros L, Iorio R, Paoletti B, et al. Parásitos intestinales y patógenos transmitidos por vectores en gatos callejeros y libres que viven en Grecia continental e insular. PLoS Negl Trop Dis. 2017;11:e0005335.

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Otranto D, Napoli E, Latrofa MS, Annoscia G, Tarallo VD, Greco G, et al. Leishmaniosis felina y canina y otras enfermedades transmitidas por vectores en las Islas Eolias: circulación de patógenos y vectores en un entorno confinado. Parasitol veterinario. 2017;236:144–51.

Artículo PubMed Google Académico

da Silva SM, Ribeiro VM, Ribeiro RR, Tafuri WL, Melo MN, Michalick MS. Primer informe de transmisión vertical de Leishmania (Leishmania) infantum en una perra infectada naturalmente de Brasil. Parasitol veterinario. 2009; 166: 159–62.

Artículo PubMed Google Académico

Naucke TJ, Amelung S, Lorentz S. Primer informe de transmisión de leishmaniosis canina a través de heridas por mordedura de un perro infectado naturalmente en Alemania. Vector de parásitos. 2016;9:256.

Artículo Google Académico

Silva FL, Oliveira RG, Silva TM, Xavier MN, Nascimento EF, Santos RL. Transmisión venérea de la leishmaniasis visceral canina. Parasitol veterinario. 2009;160:55–9.

Artículo PubMed Google Académico

Pennisi MG, Hartmann K, Addie DD, Lutz H, Gruffydd-Jones T, Boucraut-Baralon C, et al. Transfusión de sangre en gatos: pautas ABCD para minimizar los riesgos de complicaciones iatrogénicas infecciosas. J Felino Med Surg. 2015;17:588–93.

Artículo PubMed Google Académico

Basso MA, Marques C, Santos M, Duarte A, Pissarra H, Carreira LM, et al. Tratamiento exitoso de la leishmaniosis felina usando una combinación de alopurinol y antimoniato de N-metil-glucamina. JFMS Open Rep. 2016;2:2055116916630002.

PubMed PubMed Central Google Académico

Migliazzo A, Vitale F, Calderone S, Puleio R, Binanti D, Abramo F. ​​Leishmaniosis felina: un caso con alta carga parasitaria. Dermatol veterinario. 2015;26:69–70.

Artículo PubMed Google Académico

Pepper P, Alves-Pepper S, Barros J, Beard P, Rodrigues A, Pereira MJ, et al. Leishmaniosis felina en Portugal: 3 casos (año 2014). Informes de sementales veterinarios parasitol. 2015;1–2:65–9.

Académico de Google de PubMed

Pereira A, Maia C. Infección por Leishmania en gatos y leishmaniosis felina: una revisión actualizada con una propuesta de algoritmo de diagnóstico y pautas de prevención. Curr Res Parasitol Vector Borne Dis. 2021;1:100035.

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Pennisi MG, Hartmann K, Lloret A, Addie D, Belak S, Boucraut-Baralon C, et al. Leishmaniosis en gatos: Directrices ABCD sobre prevención y manejo. J Felino Med Surg. 2013;15:638–42.

Artículo PubMed Google Académico

Pereira A, Valente J, Parreira R, Cristovao JM, Azinheira S, Campino L, et al. Un caso inusual de leishmaniosis felina con afectación de las glándulas mamarias. Top Companion Facial Med. 2019;37:100356.

Artículo PubMed Google Académico

Richter M, Schaarschmidt-Kiener D, Krudewig C. Signos oculares, diagnóstico y tratamiento a largo plazo con alopurinol en un gato con leishmaniasis. Schweiz Arco Tierheilkd. 2014;156:289–94.

Artículo CAS PubMed Google Académico

Leiva M, Lloret A, Pena T, Roura X. Terapia de leishmaniasis ocular y visceral en un gato. Oftalmol veterinario. 2005;8:71–5.

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Hervas J, de Chacon-Manrique Lara F, Lopez J, Gomez-Villamandos JC, Guerrero MJ, Moreno A. Granulomatous (pseudotumoral) iridociclitis asociada con leishmaniasis en un gato. Veterinario Rec. 2001; 149: 624–5.

Artículo CAS PubMed Google Académico

Laruelle-Magalon C, Toga I. Un caso de leishmaniasis felina. Práctica médica y quirúrgica de animales de compañía. 1996; 31:255–61.

Google Académico

Madruga G, Ribeiro AP, Ruiz T, Sousa VRF, Campos CG, Almeida ABPF, et al. Manifestaciones oculares de leishmaniasis en un gato: reporte del primer caso de Brasil. Arq Bras Med Vet Zootec. 2018;70:1514–20.

Artículo Google Académico

Francino O, Altet L, Sanchez-Robert E, Rodriguez A, Solano-Gallego L, Alberola J, et al. Advantages of real-time PCR assay for diagnosis and monitoring of canine leishmaniosis. Vet Parasitol. 2006;137:214–21.

Artículo CAS PubMed Google Académico

Rishniw M, Barr SC, Simpson KW, Frongillo MF, Franz M, Dominguez Alpizar JL. Discriminación entre seis especies de microfilarias caninas por una sola reacción en cadena de la polimerasa. Parasitol veterinario. 2006; 135: 303–14.

Artículo CAS PubMed Google Académico

Kato CY, Chung IH, Robinson LK, Austin AL, Dasch GA, Massung RF. Evaluación del ensayo de PCR en tiempo real para la detección de Rickettsia spp. y Rickettsia rickettsii en muestras clínicas almacenadas. J. Clin Microbiol. 2013;51:314–7.

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Robinson MT, Morgan ER, Woods D, Shaw SE. Reacciones en cadena de polimerasa en tiempo real y multiplex en tiempo real para la detección de Bartonella henselae en muestras de pulgas de gato, Ctenocephalides felis. Med Vet Entomol. 2010;24:449–55.

Artículo CAS PubMed Google Académico

Brunner C, Kanellos T, Meli ML, Sutton DJ, Gisler R, Gomes-Keller MA, et al. Inducción de anticuerpos después de la aplicación combinada de una vacuna de FeLV recombinante adyuvada y una vacuna de virus vivo modificado multivalente con un componente de clamidia. Vacuna. 2006; 24: 1838–46.

Artículo CAS PubMed Google Académico

Bjornvad CR, Nielsen DH, Armstrong PJ, McEvoy F, Hoelmkjaer KM, Jensen KS, et al. Evaluación de un sistema de puntuación de condición corporal de nueve puntos en gatos domésticos físicamente inactivos. Soy J Vet Res. 2011;72:433–7.

Artículo PubMed Google Académico

Athanasiou LV, Katsogiannou EG, Tsokana CN, Boutsini SG, Bisia MG, Papatsiros VG. Exposición de conejos silvestres a Leishmania infantum, Toxoplasma gondii, Anaplasma phagocytophilum y Babesia caballi evidenciada por detección de anticuerpos en suero y humor acuoso. Microorganismos. 2021;9:2616.

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Turunen HJ, Leinikki PO, Saari KM. Demostración de la síntesis intraocular de anticuerpos inmunoglobulina G contra toxoplasma para el diagnóstico específico de coriorretinitis toxoplásmica mediante inmunoensayo enzimático. J. Clin Microbiol. 1983; 17:988–92.

Artículo CAS PubMed PubMed Central Google Scholar

Chamaille L, Tran A, Meunier A, Bourdoiseau G, Ready P, Dedet JP. Mapeo del riesgo ambiental de la leishmaniasis canina en Francia. Vectores de parásitos. 2010;3:31.

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Brito FLC, Alves LC, Maia FCL, Santos ESC, Laus JL, Meunier I. Alteraciones oculares en perros naturalmente infectados con Leishmania (Leishmania) chagasi. Arch Bras Con Vet Zootec. 2006;58:768–75.

Artículo Google Académico

García-Alonso M, Blanco A, Reina D, Serrano FJ, Alonso C, Nieto CG. Inmunopatología de la uveítis en la leishmaniasis canina. Inmunoparásito. 1996; 18:617–23.

Artículo CAS PubMed Google Académico

El Goulli AF, Zribi L, Sanhaji R, Chabchoub A, Bouratbine A, Gharbi M, et al. Estudio de manifestaciones oculares y respuesta inmune humoral en ojos de perros con leishmaniasis. Vet Med Sci. 2022. https://doi.org/10.1002/vms3.982.

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Solano-Gallego L, Rodriguez-Cortes A, Iniesta L, Quintana J, Shepherd J, Sword Y, et al. Estudio serológico transversal de leishmaniasis felina en ecorregiones alrededor del Mediterráneo noroccidental. Soy J Trop Con Hyg. 2007;76:676–80.

Artículo CAS PubMed Google Académico

Ayllon T, Diniz PP, Breitschwerdt EB, Villaescusa A, Rodriguez-Franco F, Sainz A. Enfermedades transmitidas por vectores en gatos callejeros y propiedad de clientes de Madrid, España. Enfermedades zoonóticas transmitidas por vectores. 2012;12:143–50.

Artículo PubMed Google Académico

Pennisi M, Lupo T, Malara D, Masucci M, Migliazzo A, Lombardo G. Prevalencia serológica y molecular de la infección por Leishmania infantum en gatos del sur de Italia. J Felino Med Surg. 2012;14:656–7.

Google Académico

Vita S, Santori D, Aguzzi I, Petrotta E, Luciani A. Leishmaniasis felina y ehrlichiosis: investigación serológica en la región de Abruzzo. Vet Res Comun. 2005;29:319–21.

Artículo PubMed Google Académico

Navarro JA, Sanchez J, Penafiel-Verdu C, Buendia AJ, Altimira J, Vilafranca M. Histopathological lesions in 15 cats with leishmaniosis. J Comp Pathol. 2010;143:297–302.

Artículo CAS PubMed Google Académico

Minard HM, Daniel AK, Pool RR, Snowden KF, Levine GJ. Patología en la práctica: leishmaniasis cutánea. J Am Vet Med Assoc. 2017;251:57–9.

Artículo PubMed Google Académico

Villanueva-Saz S, Giner J, Fernandez A, Alcover MM, Riera C, Fisa R, et al. Perfil de electroforetograma de proteína sérica detectado en gatos aparentemente sanos infectados con Leishmania infantum—Comunicación breve. Acta veterinario colgado. 2022. https://doi.org/10.1556/004.2021.00055.

Artículo PubMed Google Académico

Tamamoto T, Ohno K, Takahashi M, Nakashima K, Fujino Y, Tsujimoto H. Serum amiloide A como marcador pronóstico en gatos con diversas enfermedades. J Vet Diag Invest. 2013;25:428–32.

Artículo PubMed Google Académico

Pennisi MG, Persichetti MF. Leishmaniosis felina: ¿el gato es un perro pequeño? Parasitol veterinario. 2018;251:131–7.

Artículo PubMed PubMed Central Google Académico

Maia C, Sousa C, Ramos C, Cristovao JM, Faisca P, Campino L. Primer caso de leishmaniosis felina causada por Leishmania infantum genotipo E en un gato con carcinoma nasal de células escamosas concurrente. JFMS Open Rep. 2015;1:2055116915593969.

PubMed PubMed Central Google Académico

Descargar referencias

Partes de este informe de caso se presentaron como un "caso misterioso" en el Congreso ECVCP en Belgrado, Serbia (5 al 8 de octubre de 2022). Los autores agradecen a Anna Sophia Müller MB, BCh, BAO, por la edición del idioma.

Esta investigación no recibió ninguna subvención específica de ninguna agencia de financiación en los sectores público, comercial o sin fines de lucro.

LABOKLIN GmbH and Co. KG, Bad Kissingen, Alemania

Ingo Schäfer, Heike Aupperle-Lellbach, Gerhard Loesenbeck, Michaela Gentil, Elisabeth Müller y Torsten J. Naucke

Práctica de pequeños animales Dr. Fritz Gräßer, Großostheim, Alemania

Albert Schmidt y Fritz Gräßer

Centro oftalmológico veterinario Frankfurt-Kalbach, Frankfurt, Alemania

andrea schiezler

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

También puede buscar este autor en PubMed Google Scholar

El gato incluido en el manuscrito fue presentado a AS, FG y ASch. IS inició el estudio, evaluó los datos y escribió el manuscrito. MG agregó detalles de las pruebas moleculares. HAL y GL realizaron los exámenes histopatológicos en ambos ojos. EM y TN supervisó el estudio. Todos los autores revisaron el manuscrito. Todos los autores leyeron y aprobaron el manuscrito final.

Correspondencia a Ingo Schäfer.

No aplica.

El dueño del mencionado gato accedió a publicar este estudio, figuras y tablas. Además de las pruebas indicadas por los veterinarios tratantes AS, FG y ASch, solo se utilizaron muestras excedentes para diagnósticos posteriores.

Los autores declaran que no tienen intereses contrapuestos.

Springer Nature se mantiene neutral con respecto a los reclamos jurisdiccionales en mapas publicados y afiliaciones institucionales.

: Electoforesis capilar de proteína sérica en un gato europeo de pelo corto de 6 años infectado con Leishmania infanum con picos policlonales en la sección alfa 2 (círculo rojo) y gamma (círculo azul).

Acceso abierto Este artículo tiene una licencia internacional Creative Commons Attribution 4.0, que permite el uso, el intercambio, la adaptación, la distribución y la reproducción en cualquier medio o formato, siempre que se otorgue el crédito correspondiente al autor o autores originales y a la fuente. proporcionar un enlace a la licencia Creative Commons e indicar si se realizaron cambios. Las imágenes u otro material de terceros en este artículo están incluidos en la licencia Creative Commons del artículo, a menos que se indique lo contrario en una línea de crédito al material. Si el material no está incluido en la licencia Creative Commons del artículo y su uso previsto no está permitido por la regulación legal o excede el uso permitido, deberá obtener el permiso directamente del titular de los derechos de autor. Para ver una copia de esta licencia, visite http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/. La renuncia de Creative Commons Public Domain Dedication (http://creativecommons.org/publicdomain/zero/1.0/) se aplica a los datos disponibles en este artículo, a menos que se indique lo contrario en una línea de crédito a los datos.

Reimpresiones y permisos

Schäfer, I., Schmidt, A., Gräßer, F. et al. Leishmaniosis felina con foco en la manifestación ocular: reporte de un caso. Vectores de parásitos 16, 161 (2023). https://doi.org/10.1186/s13071-023-05741-0

Descargar cita

Recibido: 21 enero 2023

Aceptado: 15 de marzo de 2023

Publicado: 12 mayo 2023

DOI: https://doi.org/10.1186/s13071-023-05741-0

Cualquier persona con la que compartas el siguiente enlace podrá leer este contenido:

Lo sentimos, un enlace para compartir no está disponible actualmente para este artículo.

Proporcionado por la iniciativa de intercambio de contenido Springer Nature SharedIt